شنبه 8 دی 1403
[Archive]
دوره 10، شماره 2 - ( 4-1391 )
جلد 10 شماره 2 صفحات 86-83 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Eftekhar M, Mohammadian F, Yousefnejad F, Khani P, Aflatoonian A. Effect of calcium ionophore on unfertilized oocytes after ICSI cycles. IJRM 2012; 10 (2) :83-86
URL: http://ijrm.ir/article-1-272-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-272-fa.html
افتخار مریم، محمدیان فرناز، یوسف نژاد فریبا، خانی پریسا، افلاطونیان عباس. اثرات کلسیم آینوفر بر تخمک بارور نشده بعد از سیکل های ICSI. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 10 (2) :83-86
مریم افتخار1 
، فرناز محمدیان* 2، فریبا یوسف نژاد1 ، پریسا خانی1 ، عباس افلاطونیان1
، فرناز محمدیان* 2، فریبا یوسف نژاد1 ، پریسا خانی1 ، عباس افلاطونیان1
1- مرکز تحقیقاتی درمانی ناباروری، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- گروه زنان و زایمان، دانشکده علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران ،mohammadian_farnaz@yahoo.com
2- گروه زنان و زایمان، دانشکده علوم پزشکی زنجان، زنجان، ایران ،
چکیده: (2953 مشاهده)
مقدمه: شکست باروری مهمترین مشکل در تکنیکهای کمک باروری (ART) میباشد.
هدف: هدف از این مطالعه، ارزیابی فعالیت تخمکها پس از اضافه نمودن کلسیم آینوفر بر روی تخمکهای بارور نشده در سیکل های ICSI بود.
مواد و روش ها: این مطالعه بر روی 15 سیکل ICSI (تحریک شده با پروتکل Long استاندارد) انجام شد. تخمکهای بالغ بازیافت شده با مورفولوژی نرمال که علائمی از باروری 24 ساعت پس از انجام ICSI نداشتند، وارد این مطالعه گردیدند. تخمکهای بارور و نابارور همراه با دژنراسیون از مطالعه حذف شدند. ابتدا تخمکهای بارور نشده به وسیله محیط GIVF شسته، سپس به محیط GIVF حاوی µmol 5 کلسیم آینوفر منتقل شدند و به مدت 10 دقیقه انکوبه گردیدند. بعد از طی این مراحل، دوباره تخمکها با محیط GIVF شسته، متعاقبا به محیط GIVF برگردانده و در دمای oC37 و CO2 6% انکوبه شدند. بعد از 18 ساعت، تخمکها مورد مطالعه قرار گرفتند و در تخمک های فعال شده با مشاهده حداقل یک پرونوکلئوس یا cleaved oocytes شناسایی شدند.
نتایج: بعد از تحریک تخمدان و بازیافت تخمک ها، 175 تخمک بالغ به دست آمد که تزریق اسپرم برای همه آنها انجام شد. 114 از 175 تخمک (66%)، شواهدی از باروری را بعد از 24 ساعت نشان دادند. 61 تخمک (34%) شواهدی از باروری نشان ندادند و 10 تخمک دچار دژنراسیون شده و از مطالعه خارج گردیدند. فقط 51 تخمک بارور نشده با مورفولوژی نرمال انتخاب و در معرض کلسیم آینوفر قرار گرفتند. 37 تا از تخمکهای تحت درمان (72/5%)، بارور شدند (دارای 2 پرونوکلئوس) و 32 تخمک (62/7%) شواهدی از cleavage نشان دادند. همچنین 6 جنین (11/8%) دارای کیفیت خوب بودند.
نتیجه گیری: بر طبق نتایج بدست آمده از این مطالعه، فعالسازی تخمکها با کلسیم آینوفر باعث افزایش قابل قبولی در میزان باروری می شود. در این مطالعه میزان جنینهای به دست آمده با کیفیت بالا کم بود، بنابراین ما مطالعات بیشتری را در آینده برای ارزیابی کیفیت جنین پیشنهاد می کنیم.
هدف: هدف از این مطالعه، ارزیابی فعالیت تخمکها پس از اضافه نمودن کلسیم آینوفر بر روی تخمکهای بارور نشده در سیکل های ICSI بود.
مواد و روش ها: این مطالعه بر روی 15 سیکل ICSI (تحریک شده با پروتکل Long استاندارد) انجام شد. تخمکهای بالغ بازیافت شده با مورفولوژی نرمال که علائمی از باروری 24 ساعت پس از انجام ICSI نداشتند، وارد این مطالعه گردیدند. تخمکهای بارور و نابارور همراه با دژنراسیون از مطالعه حذف شدند. ابتدا تخمکهای بارور نشده به وسیله محیط GIVF شسته، سپس به محیط GIVF حاوی µmol 5 کلسیم آینوفر منتقل شدند و به مدت 10 دقیقه انکوبه گردیدند. بعد از طی این مراحل، دوباره تخمکها با محیط GIVF شسته، متعاقبا به محیط GIVF برگردانده و در دمای oC37 و CO2 6% انکوبه شدند. بعد از 18 ساعت، تخمکها مورد مطالعه قرار گرفتند و در تخمک های فعال شده با مشاهده حداقل یک پرونوکلئوس یا cleaved oocytes شناسایی شدند.
نتایج: بعد از تحریک تخمدان و بازیافت تخمک ها، 175 تخمک بالغ به دست آمد که تزریق اسپرم برای همه آنها انجام شد. 114 از 175 تخمک (66%)، شواهدی از باروری را بعد از 24 ساعت نشان دادند. 61 تخمک (34%) شواهدی از باروری نشان ندادند و 10 تخمک دچار دژنراسیون شده و از مطالعه خارج گردیدند. فقط 51 تخمک بارور نشده با مورفولوژی نرمال انتخاب و در معرض کلسیم آینوفر قرار گرفتند. 37 تا از تخمکهای تحت درمان (72/5%)، بارور شدند (دارای 2 پرونوکلئوس) و 32 تخمک (62/7%) شواهدی از cleavage نشان دادند. همچنین 6 جنین (11/8%) دارای کیفیت خوب بودند.
نتیجه گیری: بر طبق نتایج بدست آمده از این مطالعه، فعالسازی تخمکها با کلسیم آینوفر باعث افزایش قابل قبولی در میزان باروری می شود. در این مطالعه میزان جنینهای به دست آمده با کیفیت بالا کم بود، بنابراین ما مطالعات بیشتری را در آینده برای ارزیابی کیفیت جنین پیشنهاد می کنیم.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Nasr-Esfahani MH, Deemeh MR, Tavalaee M. Artificial oocyte activation and intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2010; 94: 520-526. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.03.061]
2. Yamano S, Nakagawa K, Nakasaka H, Aono T. Fertilization failure and oocyte activation. J Med Invest 2000; 47: 1-8.
3. Flaherty SP, Payne D, Matthews CD. Fertilization failures and abnormal fertilization after intracytoplasmic sperm injection. Hum Reprod 1998; 13: 155-164. [DOI:10.1093/humrep/13.suppl_1.155]
4. The ESHRE Capri Workshop Group. Intracytoplasmic sperm injection (ICSI) in 2006: Evidence and Evolution. Hum Reprod Update 2007; 13: 515-526. [DOI:10.1093/humupd/dmm024]
5. Nasr-Esfahani MH, Razavi S, Javdan Z, Tavalaee M. Artificial oocyte activation in severe teratozoospermia undergoing intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2008; 90: 2231-2237. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2007.10.047]
6. Heindryckx B, Van der Elst J, De Sutter P, Dhont M. Treatment option for sperm- or oocyte-related fertilization failure: assisted oocyte activation following diagnostic heterologous ICSI. Hum Reprod 2005; 20: 2237-2241. [DOI:10.1093/humrep/dei029]
7. Rossi-Ferragut LM, Iaconelli A, Aoki T, Rocha CC, dos Santos DR, Pasqualotto FF, et al. Pronuclear and Morphological Features as a Cumulative Score to Select Embryos in ICSI (Intracytoplasmic Sperm Injection) Cycles According to Sperm Origin. J Assist Reprod Genet 2003; 20: 1-7. [DOI:10.1023/A:1021286119979]
8. Terada Y, Hasegawa H, Takahashi A, Ugajin T, Yaegashi N, Okamura K. Successful pregnancy after oocyte activation by a calcium ionophore for a patient with recurrent intracytoplasmic sperm injection failure, with an assessment of oocyte activation and sperm centrosomal function using bovine eggs. Fertil Steril 2009; 91: 935.e11-14. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.09.043]
9. Hosseini S, Hajian M, Moulavi F, Shahverdi A, Nasr-Esfahani M. Optimized combined electrical-chemical parthenogenetic activation for in vitro matured bovine oocytes. Anim Reprod Sci 2008; 108: 122-133. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2007.07.011]
10. Kline D, Kline J. Repetitive calcium transients and the role of calcium in exocytosis and cell cycle activation in the mouse egg*1.Develop Biol 1992; 149: 80-89. [DOI:10.1016/0012-1606(92)90265-I]
11. Meo S, Yamazaki W, Ferreira C, Perecin F, Saraiva N, Leal C, et al. Parthenogenetic activation of bovine oocytes using single and combined strontium, ionomycin and 6-dimethylaminopurine treatments. Zygote 2007; 15: 295-306. [DOI:10.1017/S0967199407004285]
12. De Sutter P, Dozortsev D, Cieslak J, Wolf G, Verlinsky Y, Dyban A. Parthenogenetic activation of human oocytes by puromycin. J Assist Reprod Genet 1992; 9: 328-337. [DOI:10.1007/BF01203955]
13. Yanagida K, Morozumi K, Katayose H, Hayashi S, Sato A. Successful pregnancy after ICSI with strontium oocyte activation in low rates of fertilization. Reprod Biomed Online 2006; 13: 801-806. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61027-9]
14. Cuthbertson K, Cobbold P. Phorbol ester and sperm activate mouse oocytes by inducing sustained oscillations in cell Ca2 & plus. 1985.
15. Fissore R, Robl J. Sperm, inositol trisphosphate, and thimerosal-induced intracellular Ca2+ elevations in rabbit eggs. Develop Biol 1993; 159: 122-130. [DOI:10.1006/dbio.1993.1226]
16. Borges E Jr, de Almeida Ferreira Braga DP, de Sousa Bonetti TC, Iaconelli A Jr, Franco JG Jr. Artificial oocyte activation with calcium ionophore A23187 in intracytoplasmic sperm injection cycles using surgically retrieved spermatozoa. Fertil Steril 2009; 92: 131-136. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.04.046]
17. Lu Q, Zhao Y, Gao X, Li Y, Ma S, Mullen S, et al. Combination of calcium ionophore A23187 with puromycin salvages human unfertilized oocytes after ICSI. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2006; 126: 72-76. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2005.10.038]
18. Nakagawa K, Yamano S, Moride N, Yamashita M, Yoshizawa M, Aono T. Effect of activation with Ca ionophore A23187 and puromycin on the development of human oocytes that failed to fertilize after intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2001; 76: 148-152. [DOI:10.1016/S0015-0282(01)01839-8]
19. Murase Y, Araki Y, Mizuno S, Kawaguchi C, Naito M, Yoshizawa M, et al. Pregnancy following chemical activation of oocytes in a couple with repeated failure of fertilization using ICSI: Case report. Hum Reprod 2004; 19: 1604-1607. [DOI:10.1093/humrep/deh294]
20. Eldar-Geva T, Brooks B, Margalioth EJ, Zylber-Haran E, Gal M, Silber SJ. Successful pregnancy and delivery after calcium ionophore oocyte activation in a normozoospermic patient with previous repeated failed fertilization after intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2003; 79: 1656-1658. [DOI:10.1016/S0015-0282(03)00369-8]
21. Ahmady A, Michael E. Successful Pregnancy and Delivery Following Intracytoplasmic Injection of Frozen-Thawed Nonviable Testicular Sperm and Oocyte Activation With Calcium Ionophore. J Androl 2007; 28: 13-14. [DOI:10.2164/jandrol.106.000174]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
