شنبه 8 شهریور 1404
[Archive]
دوره 23، شماره 7 - ( 4-1404 )
جلد 23 شماره 7 صفحات 544-533 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: R.ARAKMU.REC.1403.019
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Soltani M, Shojafar E, Ghafarizadeh A A, Moslemi A, Jalali Mashayekhi F, Baazm M. Comparison of the effects of platelet-rich plasma and nanocurcumin on the sperm quality parameters in frozen-thawed semen of men with asthenoteratozoospermia: A lab trial study. IJRM 2025; 23 (7) :533-544
URL: http://ijrm.ir/article-1-3613-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-3613-fa.html
مقایسه اثر پلاسمای غنی از پلاکت و نانوکورکومین بر کیفیت پارامترهای مایع منی مردان مبتلا به آستوتراتوزواسپرمی: یک مطالعه‌ی آزمایشگاهی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1404; 23 (7) :533-544
چکیده: (46 مشاهده)
مقدمه: انجماد اسپرم میتواند اثرات مخربی بر کیفیت اسپرم به ویژه در افراد آستنوتراتوزواسپرمی وارد کند. برای جلوگیری از آسیب سلولی مواد مختلفی به محیط انجماد افزوده میشود.
هدف: این مطالعه با هدف ارزیابی اثرات پلاسمای غنی شده از پلاکت (PRP) و نانوکورکومین (nCur) بر پارامترهای اسپرم، شاخص قطعهقطعهشدن DNA و سطح استرس اکسیداتیو در نمونههای مایع منی منجمد شده انجام شد.
مواد و روش ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، نمونههای مایع منی از 20 مرد آستنوتراتوزواسپرمی که از خرداد تا مرداد 1403 به مراکز ناباروری رستاک و قوامزاده، اراک، ایران مراجعه کردند جمعآوری شد. هر نمونه به 5 گروه تقسیم شد: کنترل (بدون درمان)،PRP50 ،PRP100 ، nCur10 و nCur20. نمونههای کنترل بدون هیچگونه ماده افزودنی منجمد شدند. پس از ذوب، پارامترهای تحرک اسپرم، زندهمانی، شاخص قطعهقطعهشدن DNA و سطوح مالون دیآلدئید برای ارزیابی استرس اکسیداتیو اندازهگیری شدند.
نتایج: درمان با (001/0 > p) PRP50 و (001/0 = p)nCur20 به طور معنیداری باعث افزایش تحرک اسپرم نسبت به گروه کنترل شد. همه گروههای درمانی پس از انجماد افزایش معنیداری در زندهمانی اسپرمها نشان دادند (001/0 > p) که بیشترین اثر در گروه PRP50 مشاهده شد (001/0 > p). اگرچه پس از انجماد بهبودی در مورفولوژی اسپرم مشاهده نشد، اما PRP و nCur به طور معناداری شاخص قطعهقطعهشدن DNA را کاهش دادند (001/0 > p) که PRP50 مؤثرترین گروه درمانی بود (001/0 > p). همچنین، هر دو ماده PRP و nCur سطوح مالون دیآلدئید را در مقایسه با گروه کنترل به طور قابل توجهی کاهش دادند (001/0 > p).
نتیجه گیری: PRP و nCur به طور مؤثری پارامترهای اسپرم را در نمونههای مایع منی منجمد شده افراد آستنوتراتوزواسپرمی بهبود میبخشند و به ویژه، PRP با غلظت 50 در بهبود کیفیت اسپرم تأثیر بیشتری نشان داد. این نتایج از کاربرد بالقوه این مواد به عنوان مواد افزودنی در پروتکلهای انجماد اسپرم برای بهبود باروری حمایت میکند.
هدف: این مطالعه با هدف ارزیابی اثرات پلاسمای غنی شده از پلاکت (PRP) و نانوکورکومین (nCur) بر پارامترهای اسپرم، شاخص قطعهقطعهشدن DNA و سطح استرس اکسیداتیو در نمونههای مایع منی منجمد شده انجام شد.
مواد و روش ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، نمونههای مایع منی از 20 مرد آستنوتراتوزواسپرمی که از خرداد تا مرداد 1403 به مراکز ناباروری رستاک و قوامزاده، اراک، ایران مراجعه کردند جمعآوری شد. هر نمونه به 5 گروه تقسیم شد: کنترل (بدون درمان)،PRP50 ،PRP100 ، nCur10 و nCur20. نمونههای کنترل بدون هیچگونه ماده افزودنی منجمد شدند. پس از ذوب، پارامترهای تحرک اسپرم، زندهمانی، شاخص قطعهقطعهشدن DNA و سطوح مالون دیآلدئید برای ارزیابی استرس اکسیداتیو اندازهگیری شدند.
نتایج: درمان با (001/0 > p) PRP50 و (001/0 = p)nCur20 به طور معنیداری باعث افزایش تحرک اسپرم نسبت به گروه کنترل شد. همه گروههای درمانی پس از انجماد افزایش معنیداری در زندهمانی اسپرمها نشان دادند (001/0 > p) که بیشترین اثر در گروه PRP50 مشاهده شد (001/0 > p). اگرچه پس از انجماد بهبودی در مورفولوژی اسپرم مشاهده نشد، اما PRP و nCur به طور معناداری شاخص قطعهقطعهشدن DNA را کاهش دادند (001/0 > p) که PRP50 مؤثرترین گروه درمانی بود (001/0 > p). همچنین، هر دو ماده PRP و nCur سطوح مالون دیآلدئید را در مقایسه با گروه کنترل به طور قابل توجهی کاهش دادند (001/0 > p).
نتیجه گیری: PRP و nCur به طور مؤثری پارامترهای اسپرم را در نمونههای مایع منی منجمد شده افراد آستنوتراتوزواسپرمی بهبود میبخشند و به ویژه، PRP با غلظت 50 در بهبود کیفیت اسپرم تأثیر بیشتری نشان داد. این نتایج از کاربرد بالقوه این مواد به عنوان مواد افزودنی در پروتکلهای انجماد اسپرم برای بهبود باروری حمایت میکند.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Lorian K, Haghdani S, Vahidi S, Nabi A. Application of autologous platelet-rich plasma exerts cryoprotective effects on biological characteristics of human oligoasthenoteratospermia samples after freezing and thawing procedures. Urol J 2024; 21: 340-347.
2. Nabavinia MS, Yari A, Ghasemi-Esmailabad S, Gholoobi A, Gholizadeh L, Nabi A, et al. Improvement of human sperm properties with platelet-rich plasma as a cryoprotectant supplement. Cell Tissue Bank 2023; 24: 307-315. [DOI:10.1007/s10561-022-10032-6] [PMID]
3. Agarwal A, Farkouh A, Parekh N, Zini A, Arafa M, Kandil H, et al. Sperm DNA fragmentation: A critical assessment of clinical practice guidelines. World J Mens Health 2021; 40: 30-37. [DOI:10.5534/wjmh.210056] [PMID] [PMCID]
4. Hosseini S, Kazemi M, Salehpour S, Saharkhiz N, Majdi L. Evaluation of the effect of platelet-rich plasma (PRP) on the sperm parameters. Taiw J Obstet Gynecol 2025; 64: 313-318. [DOI:10.1016/j.tjog.2024.12.010] [PMID]
5. Azizi M, Cheraghi E, Soleimani Mehranjani M. Effect of myo‐inositol on sperm quality and biochemical factors in cryopreserved semen of patients with asthenospermia. Andrologia 2022; 54: e14528. [DOI:10.1111/and.14528] [PMID]
6. Ozimic S, Ban-Frangez H, Stimpfel M. Sperm cryopreservation today: Approaches, efficiency, and pitfalls. Curr Issues Mol Biol 2023; 45: 4716-4734. [DOI:10.3390/cimb45060300] [PMID] [PMCID]
7. Jannatifar R, Asa E, Sahraei SS, Verdi A, Piroozmanesh H. N‐acetyl‐l‐cysteine and alpha lipoic acid are protective supplement on human sperm parameters in cryopreservation of asthenoteratozoospermia patients. Andrologia 2022; 54: e14612. [DOI:10.1111/and.14612] [PMID]
8. Kumar A, Prasad J, Srivastava N, Ghosh S. Strategies to minimize various stress-related freeze-thaw damages during conventional cryopreservation of mammalian spermatozoa. Biopreserv Biobank 2019; 17: 603-612. [DOI:10.1089/bio.2019.0037] [PMID]
9. Almadaly EA, Ibrahim IM, Salama MS, Ashour MA, Sahwan FM, El-Kon II, et al. Effect of platelet-rich plasma (PRP) on post-thaw quality, kinematics and in vivo fertility of fertile and subfertile buffalo (Bubalus bubalis) spermatozoa. Vet Res Commun 2023; 47: 61-72. [DOI:10.1007/s11259-022-09928-1] [PMID]
10. Fazli F, Torkashvand H, Soltanian AR, Babalhavaeji A, Olomi H, Pilehvari S. Effects of testicular platelet-rich plasma injection on sperm parameters in men with severe oligoasthenoteratozoospermia: A clinical trial evaluation. Int J Fertil Steril 2024; 18: 71-76.
11. Gilani SJ, Imam SS, Jafar M, Alshehri S, Taleuzzaman M, Jahangir MA. Curcumin nanomedicine and their application in the management of disease. In: Rahman M, Beg S, Amami MA, Choudhry H, Ahmad A, Alharbi KhS. Biomarkers as targeted herbal drug discovery: A pharmacological approach to nanomedicines. New York: Apple Academic Press; 2021: 43-63. [DOI:10.1201/9781003045526-3]
12. Santonastaso M, Mottola F, Iovine C, Colacurci N, Rocco L. Protective effects of curcumin on the outcome of cryopreservation in human sperm. Reprod Sci 2021; 28: 2895-2905. [DOI:10.1007/s43032-021-00572-9] [PMID] [PMCID]
13. Sadraei MR, Tavalaee M, Forouzanfar M, Nasr‐Esfahani MH. Effect of curcumin, and nano‐curcumin on sperm function in varicocele rat model. Andrologia 2022; 54: e14282. [DOI:10.1111/and.14282] [PMID]
14. Salehi E, Shadboorestan A, Mohammadi-Bardbori A, Mousavi A, Kargar-Abargouei E, Sarkoohi P, et al. Effect of crocin and quercetin supplementation in cryopreservation medium on post-thaw human sperm quality. Cell Tissue Bank 2024; 25: 531-540. [DOI:10.1007/s10561-023-10110-3] [PMID]
15. Sadegh A, Nasiri-Foomani N, Mastani R, Samadi F. Flow cytometry evaluation of Dalagh ram post-thaw semen incorporated with curcumin-loaded niosomal nanocarriers. Small Rumin Res 2024; 240: 107346. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2024.107346]
16. Doğu Z, Aral F, Şahinöz E, Temiz E, Koyuncu İ. Impact of curcumin supplementation on sperm characteristics and gene expression in fish sperm freezing medium. Genet Aquat Org 2023; 7: GA729. [DOI:10.4194/GA729]
17. Abdel-Khalek K, Gabr S, Younan GE, El-Din MS, Ghodaia AE. Variables of cryopreserved rabbit spermatozoa as affected by nano-curcumin supplementation into tris-extender containing egg yolk or soybean lecithin extender. J Sustain Agric Environ Sci 2024; 3: 10-17. [DOI:10.21608/jsaes.2024.254166.1068]
18. Karakus FN, Kuran SB, Solakoglu S. Effect of curcumin on sperm parameters after the cryopreservation. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2021; 267: 161-166. [DOI:10.1016/j.ejogrb.2021.10.027] [PMID]
19. El-Khawagah AR, Kandiel MM, Samir H. Effect of quercetin supplementation in extender on sperm kinematics, extracellular enzymes release, and oxidative stress of egyptian buffalo bulls frozen-thawed semen. Front Vet Sci 2020; 7: 604460. [DOI:10.3389/fvets.2020.604460] [PMID] [PMCID]
20. Khalil WA, Hassan MA, Hegazy MM, Fathy K, El‐Harairy MA, Ismail AA, et al. Effects of curcumin oil nano‐emulsion on buffalo sperm cryopreservation: Insights on sperm quality, kinematic parameters, sperm ultrastructure, oxidative stress, apoptosis, microbiota, and molecular docking analysis and fertilising capacity. Reprod Domest Anim 2025; 60: e70062. [DOI:10.1111/rda.70062] [PMID]
21. Marchlewska K, Erkiert-Kusiak M, Walczak-Jędrzejowska R, Słowikowska-Hilczer J. Sperm migration and hyaluronic acid binding: Implications for male fertility evaluation. Int J Mol Sci 2024; 25: 9995. [DOI:10.3390/ijms25189995] [PMID] [PMCID]
22. Dcunha R, Hussein RS, Ananda H, Kumari S, Adiga SK, Kannan N, et al. Current insights and latest updates in sperm motility and associated applications in assisted reproduction. Reprod Sci 2022; 26: 7-25. [DOI:10.1007/s43032-020-00408-y] [PMID] [PMCID]
23. Fleming SD, Thomson LK. The oxidative stress of human sperm cryopreservation. Antioxidants 2025; 14: 402. [DOI:10.3390/antiox14040402] [PMID] [PMCID]
24. Salama MS, Shehabeldin AM, Ashour MA, Al-Ghadi MQ, Marghani BH, El-kon I, et al. Effect of the addition of platelet-rich plasma to Boer Buck semen on sperm quality and antioxidant activity before and after cryopreservation and in vivo fertility. Small Rumin Res 2024; 230: 107167. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2023.107167]
25. Ghasemian Nafchi H, Azizi Y, Amjadi F, Halvaei I. In vitro effects of plasma rich in growth factors on human teratozoospermic semen samples. Syst Biol Reprod Med 2023; 69: 255-263. [DOI:10.1080/19396368.2023.2180455] [PMID]
26. Hemati U, Moshajari M, Jalali Mashayekhi F, Bayat M, Moslemi A, Baazm M. The effect of curcumin on NRF2/Keap1 signalling pathway in the epididymis of mouse experimental cryptorchidism. Andrologia 2022; 54: e14532. [DOI:10.1111/and.14532] [PMID]
27. Karthikeyan A, Senthil N, Min T. Nanocurcumin: A promising candidate for therapeutic applications. Front Pharmacol 2020; 11: 487-511. [DOI:10.3389/fphar.2020.00487] [PMID] [PMCID]
28. Fard NM, Bayat M, Haeri SMJ, Baazm M. Nanocurcumin decreases nucleotide-binding oligomerization domain-like receptor family pyrin domain-containing 3 complex expressions in an experimental testicular torsion model. Int J Fertil Steril 2024; 18: 411-416.
29. Mughal DH, Ijaz A, Yousaf MS, Wadood F, Farooq U, Mahmood SA, et al. Effect of osmotic pressure on spermatozoa characteristics of cryopreserved buffalo bull (Bubalus bubalis) semen. J Appl Anim Res 2018; 46: 274-277. [DOI:10.1080/09712119.2017.1295971]
30. Bader R, Ibrahim JN, Moussa M, Mourad A, Azoury J, Azoury J, et al. In vitro effect of autologous platelet‐rich plasma on H2O2‐induced oxidative stress in human spermatozoa. Andrology 2020; 8: 191-200. [DOI:10.1111/andr.12648] [PMID]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
