جمعه 7 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 11، شماره 12 - ( 10-1391 )
جلد 11 شماره 12 صفحات 0-1005 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Kazemi A, Ramezanzadeh F, Nasr-Esfahani M H, Saboor Yaraghi A A, Ahmadi M. Does dietary fat intake influence oocyte competence and embryo quality by inducing oxidative stress in follicular fluid?. IJRM 2013; 11 (12) :1005-0
URL: http://ijrm.ir/article-1-375-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-375-fa.html
کاظمی اشرف، رمضان زاده فاطمه، نصراصفهانی محمدحسین، صبورنراقی علی اکبر، احمدی مهدی. آیا میزان دریافت چربی با القاء استرس اکسیداتیو در مایع فولیکولی روی صلاحیت اووسیت دخالت می کند؟
. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1391; 11 (12) :1005-0
1- مرکز تحقیقات پرستاری و مامایی، دانشکده پرستاری و مامایی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران ، Kazemi@nm.mui.ac.ir
2- مرکز تحقیقات باروری ولی عصر، بیمارستان امام خمینی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه باروری و تکامل، موسسه رویان بیوتکنولوژی حیوانات اصفهان، اصفهان، ایران
4- گروه تغذیه و بیوشیمی، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی تهران،تهران، ایران
5- مرکز باروری و ناباروری اصفهان، اصفهان، ایران
2- مرکز تحقیقات باروری ولی عصر، بیمارستان امام خمینی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3- گروه باروری و تکامل، موسسه رویان بیوتکنولوژی حیوانات اصفهان، اصفهان، ایران
4- گروه تغذیه و بیوشیمی، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی تهران،تهران، ایران
5- مرکز باروری و ناباروری اصفهان، اصفهان، ایران
چکیده: (3082 مشاهده)
مقدمه: رژیم پرچربی ممکن است با القاء استرس اکسیداتیو در محیط فولیکولی، تکامل و رسیدگی اووسیت و تکامل رویانی را تغییر دهد.
هدف: تحقیق آینده نگر حاضر با هدف ارزیابی ارتباط بین دریافت چربی در غذا و استرس اکسیداتیو مایع فولیکولی با قابلیت اووسیت و کیفیت رویان انجام شده است.
مواد و روشها: مایع فولیکولی از 236 زن تحت درمان روش های کمک باروری جمع آوری شد. سطح مالون دی آلدئید (MDA) و ظرفیت تام آنتی اکسیدانت (TAC) مایع فولیکولی به عنوان مارکرهای استرس اکسیداتیو ارزیابی شد. در سیکل درمان کمک باروری میزان دریافت چربی غذایی و اجزاء آن مورد بررسی قرار گرفت. درصد اووسیت ها در مرحله متافاز دو، میزان لقاح، میزان رویان بدون فراگمانتاسیون، میانگین بلاستومرها و میزان کلیواژ مطلوب به عنوان مارکرهای قابلیتهای اووسیت در نظر گرفته شد.
نتایج: سطح MDA در مایع فولیکولی با میزان دریافت اسیدهای چرب چند زنجیرهای غیراشباع ارتباط مثبت (0/02=p) و با میزان کلیواژ خوب رویانی ارتباط منفی (0/045=p) داشت. همچنین میزان کلیواژ خوب (0/005=p) و میانگین بلاستومرها (0/006=p) ارتباط منفی با میزان دریافت اسیدهای چرب چند زنجیرهای غیراشباع داشت. درصد اووسیت در مرحله متافاز دو به شکل مثبت با سطح TAC مایع فولیکلی ارتباط نشان داد (0/046=p). همچنین بین برخی مارکرهای صلاحیت اووسیت و میزان دریافت کالری از مصرف چربی ارتباط معنیدار دیده شد.
نتیجه گیری: یافتههای تحقیق نشان داد رژیم پرچربی ممکن است استرس اکسیداتیو را در محیط پیرامون اووسیت القاء کند و اثرات منفی بر صلاحیت اووسیت داشته باشد. این اثر میتواند به وسیله دریافت اسیدهای چرب چندزنجیرهای غیراشباع اتفاق بیفتد. از آنجایی که رسیدگی تخمک با سطح TAC مرتبط است و اووسیتهایی که در معرض سطح پایینتری از TAC هستند ممکن است شانس کمتری برای لقاح و تکامل بعدی داشته باشند.
هدف: تحقیق آینده نگر حاضر با هدف ارزیابی ارتباط بین دریافت چربی در غذا و استرس اکسیداتیو مایع فولیکولی با قابلیت اووسیت و کیفیت رویان انجام شده است.
مواد و روشها: مایع فولیکولی از 236 زن تحت درمان روش های کمک باروری جمع آوری شد. سطح مالون دی آلدئید (MDA) و ظرفیت تام آنتی اکسیدانت (TAC) مایع فولیکولی به عنوان مارکرهای استرس اکسیداتیو ارزیابی شد. در سیکل درمان کمک باروری میزان دریافت چربی غذایی و اجزاء آن مورد بررسی قرار گرفت. درصد اووسیت ها در مرحله متافاز دو، میزان لقاح، میزان رویان بدون فراگمانتاسیون، میانگین بلاستومرها و میزان کلیواژ مطلوب به عنوان مارکرهای قابلیتهای اووسیت در نظر گرفته شد.
نتایج: سطح MDA در مایع فولیکولی با میزان دریافت اسیدهای چرب چند زنجیرهای غیراشباع ارتباط مثبت (0/02=p) و با میزان کلیواژ خوب رویانی ارتباط منفی (0/045=p) داشت. همچنین میزان کلیواژ خوب (0/005=p) و میانگین بلاستومرها (0/006=p) ارتباط منفی با میزان دریافت اسیدهای چرب چند زنجیرهای غیراشباع داشت. درصد اووسیت در مرحله متافاز دو به شکل مثبت با سطح TAC مایع فولیکلی ارتباط نشان داد (0/046=p). همچنین بین برخی مارکرهای صلاحیت اووسیت و میزان دریافت کالری از مصرف چربی ارتباط معنیدار دیده شد.
نتیجه گیری: یافتههای تحقیق نشان داد رژیم پرچربی ممکن است استرس اکسیداتیو را در محیط پیرامون اووسیت القاء کند و اثرات منفی بر صلاحیت اووسیت داشته باشد. این اثر میتواند به وسیله دریافت اسیدهای چرب چندزنجیرهای غیراشباع اتفاق بیفتد. از آنجایی که رسیدگی تخمک با سطح TAC مرتبط است و اووسیتهایی که در معرض سطح پایینتری از TAC هستند ممکن است شانس کمتری برای لقاح و تکامل بعدی داشته باشند.
واژه‌های کلیدی: چربی دریافتی، استرس اکسیداتیو، مایع فولیکولی، اووسیت، کیفیت رویان، مالون دی آلدئید، ظرفیت تام آنتی اکسیدانت
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Hanukoglu I. Antioxidant protective mechanisms against reactive oxygen species (ROS) generated by mitochondrial P450 systems in steroidogenic cells. Drug Metab Rev 2006; 38: 171-196. [DOI:10.1080/03602530600570040]
2. Das S, Chattopadhyay R, Ghosh S, Goswami SK, Chakravarty BN, Chaudhury K. Reactive oxygen species level in follicular fluid embryo quality marker in IVF? Hum Reprod 2006; 21: 2403-2407. [DOI:10.1093/humrep/del156]
3. Song YL, Quan S, Tian JW, Li H, Chen SM, Xing FQ. Relationship between protein oxidation levels in the follicular fluid and the outcome parameters of in vitro fertilization-embryo transplantation. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao 2009; 29: 160-163. (IN Chinese)
4. Jozwik M, Wolczynski S, Szamatowicz M. Oxidative stress markers in preovulatory follicular fluid in humans. Mol Hum Reprod 1999; 5: 409-413. [DOI:10.1093/molehr/5.5.409]
5. Fujimoto VY, Bloom MS, Huddleston HG, Shelley WB, Ocque AJ, Browne RW. Correlations of follicular fluid oxidative stress biomarkers and enzyme activities with embryo morphology parameters during in vitro fertilization. Fertil Steril 2011; 96: 1357-1361. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2011.09.032]
6. Couillard C, Pomerleau S, Ruel G, Archer WR, Bergeron J, Couture P, et al. Associations between hypertriglyceridemia, dietary fat intake, oxidative stress, and endothelial activation in men. Nutrition 2006; 22: 600-608. [DOI:10.1016/j.nut.2006.03.007]
7. Eichhorn B, Muller G, Leuner A, Sawamura T, Ravens U, Morawietz H. Impaired vascular function in small resistance arteries of LOX-1 overexpressing mice on high-fat diet Source. Cardiovasc Res 2009; 82: 493-502. [DOI:10.1093/cvr/cvp089]
8. Panchal SK, Poudyal H, Iyer A, Nazer R, Alam MA, Diwan V, et al . High-carbohydrate, High-fat Diet–induced Metabolic Syndrome and Cardiovascular Remodeling in Rats. J Cardiovasc Pharmacol 2011; 57: 611-624. [DOI:10.1097/FJC.0b013e3181feb90a]
9. Uchida K, Suehiro A, Nakanishi M, Sawamura T, Wakabayashi I. Associations of atherosclerotic risk factors with oxidized low-density lipoproteinevaluated by LOX-1 ligand activity in healthy men. Clin Chim Acta 2011; 412: 1643-1647. [DOI:10.1016/j.cca.2011.05.022]
10. Vignon F, Vivier C, Roll-Back MH, Clavert A, Cranz C, Reville P. Lipid composition of peritoneal and follicular ovulatory fluid from patients participating in an in vitro fertilization protocol. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol (Paris) 1991; 20: 321-324.
11. Leese HJ, Hugentobler SA, Gray SM, Morris DG, Sturmey RG, Whitear SL, et al. Female reproductive tract fluids: composition, mechanism of formation and potential role in the developmental origins of health and disease. Reprod Fertil Dev 2008; 20: 1-8. [DOI:10.1071/RD07153]
12. Laboratory manual of the WHO for the examination of human semen and sperm-cervical mucus interaction). Ann Ist Super Sanita 2001; 37: 1-123.
13. Mirmiran P, Esfahani FH, Mehrabi Y, Hedayati M, Azizi F. Reliability and relative validity of an FFQ for nutrients in the Tehran lipid and glucose study. Public Health Nutr 2010; 13: 654-662. [DOI:10.1017/S1368980009991698]
14. Craig CL, Marshall AL, Sjostrom M, Bauman AE, Booth ML, Ainsworth BE, et al. International physical activity questionnaire: 12-country reliability and validity. Med Sci Sports Exerc 2003; 35: 1381-1395. [DOI:10.1249/01.MSS.0000078924.61453.FB]
15. Oja P, Laukkanen R, Pasanen M, Tyry T, Vuori I. A 2-km walking test for assessing the cardiorespiratory fitness of healthy adults. Int J Sports Med 1991; 12: 356-362. [DOI:10.1055/s-2007-1024694]
16. Oral O, Kutlu T, Aksoy E, Fccolu C, Uslu H, Turul S. The effects of oxidative stress on outcomes of assisted reproductive techniques. J Assist Reprod Genet 2006; 23: 81-85. [DOI:10.1007/s10815-005-9010-4]
17. Attaran, M, Pasqualotto E, Falcone T, Goldberg JM, Miller KF, Agarwal A, et al. The effect of follicular fluid reactive oxygen species on the outcome of in vitro fertilization. Int J Fertil Womens Med 2000; 45: 314-320.
18. Fito M, Guxens M, Corella D, Saez G, Estruch R, de la Torre R, et al. Effect of a traditional mediterranean diet on lipoprotein oxidation- A randomized controlled trial. Arch Int Med 2007; 7:1195-1203. [DOI:10.1001/archinte.167.11.1195]
19. Derosa G, Cicero AFG, Fogari E, DAngelo A, Bonaventura A, Maffioli P. Effects of n-3 PUFA on insulin resistance after an oral fat load. Eur J Lipid Sci Technol 2011; 113: 950-960. [DOI:10.1002/ejlt.201000504]
20. Penumetcha M, Song M, Merchant N, Parthasarathy S. Pretreatment with n-6 PUFA protects against subsequent high fat diet induced atherosclerosis-Potential role of oxidative stress-induced antioxidant defense. Atherosclerosis 2012; 220: 53-58. [DOI:10.1016/j.atherosclerosis.2011.10.001]
21. Marei WF, Wathes DC, Fouladi-Nashta AA. Impact of linoleic acid on bovine oocyte maturation and embryo development. Reproduction 2010; 139: 979-988. [DOI:10.1530/REP-09-0503]
22. Bilby TR, Block J, do Amaral BC, Sa Filho O, Silvestre FT, Hansen PJ, et al. Effects of dietary unsaturated fatty acids on oocyte quality and follicular development in lactating dairy cows in summer. J Dairy Sci 2006; 89: 3891-3903. [DOI:10.3168/jds.S0022-0302(06)72432-8]
23. Gutteridge JM, Halliwell B. Free radicals and antioxidants in the year 2000 A historical look to the future. Ann N Y Acad Sci 2000; 899: 136-147. [DOI:10.1111/j.1749-6632.2000.tb06182.x]
24. Wakefield SL, Lane M, Schulz SJ, Hebart ML, Thompson JG, Mitchell M. Maternal supply of omega-3 polyunsaturated fatty acids alter mechanisms involved in oocyte and early embryo development in the mouse. Am J Physiol Endocrinol Metab 2008; 294: E425-434. [DOI:10.1152/ajpendo.00409.2007]
25. Jungheim ES, Macones GA, Odem RR, Patterson BW, Lanzendorf SE, Ratts VS, et al. Associations between free fatty acids, cumulus oocyte complex morphology and ovarian function during in vitro fertilization. Fertil Steril 2011; 95: 1970-1974. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2011.01.154]
26. Liu J, Li Y. Effect of oxidative stress and apoptosis in granulosa cells on the outcome of IVF-ET. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban 2010; 35: 990-994. (In Chinese)
27. Browne RW, Bloom MS, Shelly WB, Ocque AJ, Huddleston HG, Fujimoto VY. Follicular fluid high density lipoprotein-associated micronutrient levels are associated with embryo fragmentation during IVF. J Assist Reprod Genet 2009; 26: 557-560. [DOI:10.1007/s10815-009-9367-x]
28. Ozkaya MO, Nazıroglu M, Barak C, Berkkanoglu M. Effects of multivitamin/mineral supplementation on trace element levels in serum and follicular fluid of women undergoing in vitro fertilization (IVF). J Hum Reprod Sci 2011; 139: 1-9.
29. Maedomari N, Kikuchi K, Ozawa M, Noguchi J, Kaneko H, Ohnuma K, et al. Cytoplasmic glutathione regulated by cumulus cells during porcine oocyte maturation affects fertilization and embryonic development in vitro. Theriogenology 2007; 67: 983-993. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.11.012]
30. Agarwal A, Allamaneni S. Role of free radicals in female reproductive diseases and assisted reproduction. Reprod Biomed Online 2004; 9: 338-3347. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)62151-7]
31. Chattopadhayay R, Ganesh A, Samanta J, Jana SK, Chakravarty BN, Chaudhury K. Effect of follicular fluid oxidative stress on meiotic spindle formation in infertile women with polycystic ovarian syndrome. Gynecol Obstet Invest 2010; 69: 197-202. [DOI:10.1159/000270900]
32. Yoshida M. Role of glutathione in the maturation and fertilization of pig oocytes in vitro. Mol Reprod Dev 1993; 35: 76-81. [DOI:10.1002/mrd.1080350113]
33. Zuelke KA, Jeffay SC, Zucker RM, Perreault SD. Glutathione (GSH) concentrations vary with the cell cycle in maturing hamster oocytes, zygotes, and pre-implantation stage embryos. Mol Reprod Dev 2003; 64: 106-112. [DOI:10.1002/mrd.10214]
34. Roberts CK, Barnard RJ, Sindhu RK, Jurczak M, Ehdaie A, Vaziri ND. Oxidative stress and dysregulation of NAD(P)H oxidase and antioxidant enzymes in diet-induced metabolic syndrome. Metabolism 2006; 55: 928-934. [DOI:10.1016/j.metabol.2006.02.022]
35. Armstrong DG, Gong JG, Webb R. Interactions between nutrition and ovarian activity in cattle: hysiological, cellular and molecular mechanisms. Reproduction 2002; 61 (Suppl.): 403-414.
36. Adamiak SJ, Mackie K, Watt RG, Webb R, Sinclair KD. Impact of nutrition on oocyte quality: cumulative effects of body composition and diet leading to hyperinsulinemia in cattle. Biol Reprod 2005; 73: 918-926. [DOI:10.1095/biolreprod.105.041483]
37. Takikawa S, Iwase A, Goto M, Harata T, Umezu T, Nakahara T, et al. Assessment of the predictive value of follicular fluid insulin, leptin and adiponectin in assisted reproductive cycles. Gynecol Endocrinol 2010; 26: 494-499. [DOI:10.3109/09513591003632050]
38. Lim S, Won H, Kim Y, Jang M, Jyothi KR, Kim Y, et al. Antioxidant enzymes induced by repeated intake of excess energy in the form of high-fat, high-carbohydrate meals are not sufficient to block oxidative stress in healthy lean individuals. Br J Nutr 2011; 106: 1544-1551. [DOI:10.1017/S0007114511002091]
39. Ryan AS, Bailey-Hall E, Nelson EB, Salem N Jr. The hypolipidemic effect of an ethyl ester of algal-docosahexaenoic acid in rats fed a high-fructose diet. Lipids 2009; 44: 817-826. [DOI:10.1007/s11745-009-3330-6]
40. Kondo I, Funahashi K, Nakamura M, Ojima T, Yoshita K, Nakamura Y. Association between Food Group Intake and Serum Total Cholesterol in the Japanese Population: NIPPON DATA 80/90. Mol Hum Reprod 2010; 20 (Suppl.): S576-S578.
41. Gomez-Ruiz A, Milagro FI, Campion J, Martinez JA, de Miguel C. High-fat diet feeding alters metabolic response to fasting/non fasting conditions. Effect on caveolin expression and insulin signaling. Lipids Health Dis 2011; 10: 55. [DOI:10.1186/1476-511X-10-55]
42. Stranahan AM, Cutler RG, Button C, Telljohann R, Mattson MP. Diet-induced elevations in serum cholesterol are associated with alterations in hippocampal lipid metabolism and increased oxidative stress. J Neurochem 2011; 118: 611-615. [DOI:10.1111/j.1471-4159.2011.07351.x]
43. Uribarri J, Woodruff S, Goodman S, Cai W, Chen X, Pyzik R, et al. Advanced glycation end products in foods and a practical guide to their reduction in the diet. J Am Diet Assoc 2010; 110: 911-916. [DOI:10.1016/j.jada.2010.03.018]
44. Diamanti-Kandarakis E, Piperi C, Korkolopoulou P, Kandaraki E, Levidou G, Papalois A, et al. Accumulation of dietary glycotoxins in the reproductive system of normal female rats. J Mol Med 2007; 85: 1413-1420. [DOI:10.1007/s00109-007-0246-6]
45. Tatone C, Amicarelli F, Carbone MC, Monteleone P, Caserta D, Marci R, et al. Cellular and molecular aspects of ovarian follicle ageing. Hum Reprod Update 2008; 14: 131-142. [DOI:10.1093/humupd/dmm048]
46. Jimoh FO, Odutuga AA, Obaleye JA. Changes in Oxidized Groundnut Oil and its Effect on Na+/k+ - Atpase in Rat Tissues. Pak J Nutr 2007; 6: 63-67. [DOI:10.3923/pjn.2007.63.67]
47. Dhibi M, Brahmi F, Mnari A, Houas Z, Chargui I, Bchir L, et al. The intake of high fat diet with different trans fatty acid levels differentially induces oxidative stress and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD) in rats. Nutr Metabol (Lond) 2011; 8: 65. [DOI:10.1186/1743-7075-8-65]
48. Rizos D, Gutierrez-Adan A, Perez-Garnelo S, De La Fuente J, Boland MP, Lonergan P. Bovine embryo culture in the presence or absence of serum: implications for blastocyst development, cryotolerance, and messenger RNA expression. Biol Reprod 2003; 68: 236-243. [DOI:10.1095/biolreprod.102.007799]
49. Vanholder T, Leroy JL, Soom AV, Opsomer G, Maes D, Coryn M, et al. Effect of non-esterified fatty acids on bovine granulosa cell steroidogenesis and proliferation in vitro. Anim Reprod Sci 2005; 87: 33-44. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2004.09.006]
50. Childs S, Hennessy AA, Sreenan JM, Wathes DC, Cheng Z, Stanton C, et al. Effect of level of dietary n-3 polyunsaturated fatty acid supplementation on systemic and tissue fatty acid concentrations and on selected reproductive variables in cattle. Theriogenology 2008; 70: 595-611. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2008.04.002]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
