شنبه 1 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 1 - ( 11-1392 )
جلد 12 شماره 1 صفحات 46-37 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Asadi M H, Javanmardi S, Movahedin M. Derivation of ES-like cell from neonatal mouse testis cells in autologous sertoli cells co-culture system. IJRM 2014; 12 (1) :37-46
URL: http://ijrm.ir/article-1-472-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-472-fa.html
اسدی محمد حسین، جوانمردی ستاره، موحدین منصوره. جداسازی، تکثیرو غنی سازی سلول های بنیادی اسپرماتوگونی موش نوزاد در روش هم کشتی با سلول های سرتولی با منبع یکسان. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 12 (1) :37-46
1- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ، setareh_javanmardy@yahoo.com
3- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
2- گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ، setareh_javanmardy@yahoo.com
3- گروه علوم تشریح، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
چکیده: (2934 مشاهده)
مقدمه: سلولهای بنیادی اسپرماتوگونی (SSCs) یک جمعیت خودنوزا از سلولهای بنیادی جنس مذکر هستند. SSC ها همانند سلولهای بنیادی جنینی دارای پتانسیل تمایزی هستند. این سلولهای بنیادی شبهجنینی میتوانند منبع بالقوهای برای سلولهای پرتوان جهت درمان بر پایه سلول بنیادی باشند.
هدف: ارائه یک سیستم هم کشتی ساده و مقرون به صرفه برای تولید سلولهای بنیادی شبه جنینی از بیضه موش نوزاد.
مواد و روشها: سلولهای جدا شده از بیضه در محیط DMEM/F12 کشت داده شدند. ماهیت سلولهای جداسازی شده و سلولهای بنیادی شبه جنینی به دست آمده با روش ایمنوسیتوشیمی و از طریق ارزیابی وجود پروتئینهای PLZF، Vimentin، Oct4 و Nanog تأیید شد و بیان ژنهای اختصاصی سلول ژرم و پرتوانی با استفاده از تکنیک qPCR، به ترتیب در کلونیهای بنیادی شبه جنینی وSSCها مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: نتایج حاصل از qPCR نشان داد که بیان ژنهای پرتوانی در سلولهای بنیادی شبه جنینی افزایش و بیان ژنهای اختصاصی سلول ژرم کاهش معنیدار پیدا میکنند بهعلاوه شاخصهای پرتوانی درسلولهای بنیادی شبه جنینی مثبت بودند. یافتههای این مطالعه نشان داد که با این روش تولید سلولهای بنیادی شبه جنینی از SSC ها، ساده تر از روشهای شناخته شده است.
نتیجهگیری: ما یک راه ساده و عملی را برای برای به دست آوردن سلولهای بنیادی شبه جنینی از SSC ها در محیط کشت معرفی کرده ایم. در واقع یک سیستم کشت کارآمد میتواند یک روش با ارزش برای مطالعه سیستمهای خود تجدید در SSC ها و تولید سلولهای شبه بنیادی باشد.
هدف: ارائه یک سیستم هم کشتی ساده و مقرون به صرفه برای تولید سلولهای بنیادی شبه جنینی از بیضه موش نوزاد.
مواد و روشها: سلولهای جدا شده از بیضه در محیط DMEM/F12 کشت داده شدند. ماهیت سلولهای جداسازی شده و سلولهای بنیادی شبه جنینی به دست آمده با روش ایمنوسیتوشیمی و از طریق ارزیابی وجود پروتئینهای PLZF، Vimentin، Oct4 و Nanog تأیید شد و بیان ژنهای اختصاصی سلول ژرم و پرتوانی با استفاده از تکنیک qPCR، به ترتیب در کلونیهای بنیادی شبه جنینی وSSCها مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: نتایج حاصل از qPCR نشان داد که بیان ژنهای پرتوانی در سلولهای بنیادی شبه جنینی افزایش و بیان ژنهای اختصاصی سلول ژرم کاهش معنیدار پیدا میکنند بهعلاوه شاخصهای پرتوانی درسلولهای بنیادی شبه جنینی مثبت بودند. یافتههای این مطالعه نشان داد که با این روش تولید سلولهای بنیادی شبه جنینی از SSC ها، ساده تر از روشهای شناخته شده است.
نتیجهگیری: ما یک راه ساده و عملی را برای برای به دست آوردن سلولهای بنیادی شبه جنینی از SSC ها در محیط کشت معرفی کرده ایم. در واقع یک سیستم کشت کارآمد میتواند یک روش با ارزش برای مطالعه سیستمهای خود تجدید در SSC ها و تولید سلولهای شبه بنیادی باشد.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Caires K, Broady J, McLean D. Maintaining the male germline: regulation of spermatogonial stem cells. J Endocrinol 2010; 205: 133-145. [DOI:10.1677/JOE-09-0275]
2. Meistrich ML, Van Beek M. Spermatogonial stem cells: Cell and molecular biology of the testis. New York, Oxford University Press; 1993.
3. de Rooij DG, Russell LD. All you wanted to know about spermatogonia but were afraid to ask. J Androl 2000; 21: 776.
4. Ning L, Goossens E, Geens M, Saen DV, Tournaye H. Spermatogonial stem cells as a source for regenerative medicine. Mid East Fertil Soc J 2012; 17: 1-7. [DOI:10.1016/j.mefs.2011.06.002]
5. Kanatsu-Shinohara M, Lee J, Inoue K, Ogonuki N, Miki H, Toyokuni S, et al. Pluripotency of a single spermatogonial stem cell in mice. Biol Reprod 2008; 78: 681-687. [DOI:10.1095/biolreprod.107.066068]
6. Golestaneh N, Kokkinaki M, Pant D, Jiang J, DeStefano D, Fernandez-Bueno C, et al. Pluripotent stem cells derived from adult human testes. Stem Cells Dev 2009; 18: 1115-1125. [DOI:10.1089/scd.2008.0347]
7. Ning L, Goossens E, Geens M, Van Saen D, Van Riet I, He D, et al. Mouse spermatogonial stem cells obtain morphologic and functional characteristics of hematopoietic cells in vivo. Hum Reprod 2010; 25: 3101-3109. [DOI:10.1093/humrep/deq269]
8. Simon L, Hess RA, Cooke PS. Spermatogonial stem cells, in vivo transdifferentiation and human regenerative medicine. Expert Opin Biol Ther 2010; 10: 519-530. [DOI:10.1517/14712591003614731]
9. Kanatsu-Shinohara M, Inoue K, Lee J, Yoshimoto M, Ogonuki N, Miki H, et al. Generation of pluripotent stem cells from neonatal mouse testis. Cell 2004; 119: 1001-1012. [DOI:10.1016/j.cell.2004.11.011]
10. Simon L, Ekman GC, Kostereva N, Zhang Z, Hess RA, Hofmann MC, et al. Direct transdifferentiation of stem/progenitor spermatogonia into reproductive and nonreproductive tissues of all germ layers. Stem Cells 2009; 27: 1666-1675. [DOI:10.1002/stem.93]
11. Guan K, Nayernia K, Maier LS, Wagner S, Dressel R, Lee JH, et al. Pluripotency of spermatogonial stem cells from adult mouse testis. Nature 2006; 440: 1199-1203. [DOI:10.1038/nature04697]
12. Glaser T, Opitz T, Kischlat T, Konang R, Sasse P, Fleischmann BK, et al. Adult germ line stem cells as a source of functional neurons and glia. Stem Cells 2008; 26: 2434-2443. [DOI:10.1634/stemcells.2008-0163]
13. Izadyar F, Pau F, Marh J, Slepko N, Wang T, Gonzalez R, et al. Generation of multipotent cell lines from a distinct population of male germ line stem cells. Reproduction 2008; 135: 771-784. [DOI:10.1530/REP-07-0479]
14. Seandel M, James D, Shmelkov SV, Falciatori I, Kim J, Chavala S, et al. Generation of functional multipotent adult stem cells from GPR125+ germline progenitors. Nature 2007; 449: 346-350. [DOI:10.1038/nature06129]
15. Im JE, Song SH, Kim JY, Kim KL, Baek SH, Lee DR, et al. Vascular differentiation of multipotent spermatogonial stem cells derived from neonatal mouse testis. Exp Mol Med 2012; 44: 303-309. [DOI:10.3858/emm.2012.44.4.034]
16. Kanatsu-Shinohara M, Ogonuki N, Inoue K, Miki H, Ogura A, Toyokuni S, et al. Long-term proliferation in culture and germline transmission of mouse male germline stem cells. Biol Reprod 2003; 69: 612-616. [DOI:10.1095/biolreprod.103.017012]
17. Kubota H, Avarbock MR, Brinster RL. Growth factors essential for self-renewal and expansion of mouse spermatogonial stem cells. Proc Natl Acad Sci USA 2004; 101: 16489-16494. [DOI:10.1073/pnas.0407063101]
18. Meng X, Lindahl M, Hyvönen ME, Parvinen M, de Rooij DG, Hess MW, et al. Regulation of cell fate decision of undifferentiated spermatogonia by GDNF. Science 2000; 287: 1489-1493. [DOI:10.1126/science.287.5457.1489]
19. Naughton CK, Jain S, Strickland AM, Gupta A, Milbrandt J. Glial cell-line derived neurotrophic factor-mediated RET signaling regulates spermatogonial stem cell fate. Biol Reprod 2006; 74: 314-321. [DOI:10.1095/biolreprod.105.047365]
20. Hess R, França LR, Skinner M, Griswold M. Structure of the Sertoli cell. In: Skinner MK, Grinswold MD (Eds). Sertoli Cell Biology. California, Elsevier Academic Press; 2005: 19-40. [DOI:10.1016/B978-012647751-1/50004-0]
21. Huleihel M, Lunenfeld E. Regulation of spermatogenesis by paracrine/autocrine testicular factors. Asian J Androl 2004; 6: 259-268.
22. Parks J, Lee D, Huang S, Kaproth M. Prospects for spermatogenesis in vitro. Theriogenology 2003; 59: 73-86. [DOI:10.1016/S0093-691X(02)01275-X]
23. Roser JF. Regulation of testicular function in the stallion: an intricate network of endocrine, paracrine and autocrine systems. Anim Reprod Sci 2008; 107: 179-196. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2008.05.004]
24. Merhi RA, Guillaud L, Delouis C, Cotinot C. Establishment and characterization of immortalized ovine Sertoli cell lines. In Vitro Cell Dev Biol Anim 2001; 37: 581-588.
https://doi.org/10.1290/1071-2690(2001)037<0581:EACOIO>2.0.CO;2 [DOI:10.1290/1071-2690(2001)0372.0.CO;2]
25. Pognan F, Masson MT, Lagelle F, Charuel C. Establishment of a rat Sertoli cell line that displays the morphological and some of the functional characteristics of the native cell. Cell Biol Toxicol 1997; 13: 453-463. [DOI:10.1023/A:1007475928452]
26. Zhang D, He D, Wei G, Song XF, Li XL, In T. Long-term Coxculture of Spermatogonial Stem Cells on Sertoli Cells Feeder Layer in vitro. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban 2008; 39: 6.
27. Liu S, Tang Z, Xiong T, Tang W. Isolation and characterization of human spermatogonial stem cells. Reprod Biol Endocrinol 2011; 9: 141. [DOI:10.1186/1477-7827-9-141]
28. Mohamadi S, Movahedin M, Koruji S, Jafarabadi MA, Makoolati Z. Comparison of colony formation in adult mouse spermatogonial stem cells developed in Sertoli and STO coculture systems. Andrologia 2011; 44: 431-437. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2011.01201.x]
29. Simon L, Hofmann MC, Cooke PS. Spermatogonial Stem Cells: An Alternate Source of Pluripotent Stem Cells for Regenerative Medicine. Expert Opin Biol Ther 2010; 10: 519-530. [DOI:10.1517/14712591003614731]
30. Nagano M, Brinster CJ, Orwig KE, Ryu BY, Avarbock MR, Brinster RL. Transgenic mice produced by retroviral transduction of male germ-line stem cells. Proc Natl Acad Sci USA 2001; 98: 13090-13095. [DOI:10.1073/pnas.231473498]
31. Ryu BY, Kubota H, Avarbock MR, Brinster RL. Conservation of spermatogonial stem cell self-renewal signaling between mouse and rat. Proc Natl Acad Sci USA 2005; 102: 14302-14307. [DOI:10.1073/pnas.0506970102]
32. Nagano MC, Yeh JR. The Cluster-Forming Activity Assay: A Short-Term In Vitro Method to Analyze the Activity of Mouse Spermatogonial Stem Cells. In: Orwing KE, Hermann BP (Eds). Male Germline Stem Cells: Developmental and Regenerative Potential. New York, Humana Press; 2011: 125-134. [DOI:10.1007/978-1-61737-973-4_6]
33. Kossack N, Meneses J, Shefi S, Nguyen HN, Chavez S, Nicholas C, et al. Isolation and Characterization of Pluripotent Human Spermatogonial Stem Cell‐Derived Cells. Stem Cells 2009; 27: 138-149. [DOI:10.1634/stemcells.2008-0439]
34. Hamra FK, Chapman KM, Nguyen DM, Williams-Stephens AA, Hammer RE, Garbers DL. Self renewal, expansion, and transfection of rat spermatogonial stem cells in culture. Proc Natl Acad Sci USA 2005; 102: 17430-17435. [DOI:10.1073/pnas.0508780102]
35. Tadokoro Y, Yomogida K, Ohta H, Tohda A, Nishimune Y. Homeostatic regulation of germinal stem cell proliferation by the GDNF/FSH pathway. Mech Dev 2002; 113: 29-39. [DOI:10.1016/S0925-4773(02)00004-7]
36. Kurita K, Sakai N. Functionally distinctive testicular cell lines of zebrafish to support male germ cell development. Mol Reprod Dev 2004; 67: 430-438. [DOI:10.1002/mrd.20035]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
