پنجشنبه 6 اردیبهشت 1403
[Archive]
دوره 12، شماره 1 - ( 11-1392 )
جلد 12 شماره 1 صفحات 36-29 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Cong Y, Cui L, Zhang Z, Xi J, Wang M. Rabbit antiserum to mouse embryonic stem cells delays compaction of mouse preimplantation embryos. IJRM 2014; 12 (1) :29-36
URL: http://ijrm.ir/article-1-479-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-479-fa.html
آنتی سرم خرگوش تراکم پیش از لانه گزینی سلول های بنیادی جنینی جنین موش را به تأخیر می اندازد . International Journal of Reproductive BioMedicine. 1392; 12 (1) :29-36
چکیده: (2603 مشاهده)
مقدمه: سلولهای بنیادی جنینی موش (ES) از توده سلولی داخلی بلاستوسیست (ICM) پیش از لانهگزینی استخراج میشود. بنابراین پیشنهاد میشود که سلولهای ES و ICM باید مولکولهای سطح سلولی مشابه داشته و آنتیسرم سلولهای ES میتواند تکوین ICM را مهار کند.
هدف: هدف از انجام این مطالعه بررسی اثر آنتی سرم خرگوش در سلولهای ES بر روی تکوین جنین موش پیش از لانهگزینی و تولید کایمرا بود.
مواد و روشها: جنینهای 4 سلولی موش در محیط آزمایشگاهی با دمایoC 37/5 مرطوب و 5% CO2 به مدت 36-12 ساعت بالغ شد.جنینها در محیط کشت KSOM با یا بدون آنتیسرم برای 36-12 ساعت کشت داده شدند. نسبت تکوین آزمایشگاهی از بلاستوسیست، تقسیم سلولی، پتانسیل اتصال، فعالیت آلکالن فسفاتاز، تکوین پس از کاشت و تولید کایمرا مورد بررسی و با گروه شاهد مقایسه گردید. 0/05>p معنیدار در نظر گرفته شد.
نتایج: آنتیسرم خرگوش در سلولهای ES موش باعث تأخیر تراکم جنین و decompaction در مرحله 8 سلولی شد. تکوین جنینهای 4 سلولی در حضور آنتیسرم برای 36 ساعت باعث کاهش و یا عدم وجود ICM شد. این جنینها همچنان فعالیت مثبت فسفاتاز، تقسیم سلولی نرمال، اتصال رویان، شکلگیری (ICM)، لانهگزینی و تکوین پس از لانهگزینی را نشان داد. علاوه بر این decompaction ناشی از آنتیسرم تولید و انتقال موش germline کایمریک را افزایش نداد.
نتیجهگیری: نتایج نشان داد که آنتیسرم در سلولهای ES باعث تأخیر تراکم جنین شده وبر روی لانهگزینی و تکوین جنین بعد از لانه گزینی و تولید کایمرا اثری نداشت.
هدف: هدف از انجام این مطالعه بررسی اثر آنتی سرم خرگوش در سلولهای ES بر روی تکوین جنین موش پیش از لانهگزینی و تولید کایمرا بود.
مواد و روشها: جنینهای 4 سلولی موش در محیط آزمایشگاهی با دمایoC 37/5 مرطوب و 5% CO2 به مدت 36-12 ساعت بالغ شد.جنینها در محیط کشت KSOM با یا بدون آنتیسرم برای 36-12 ساعت کشت داده شدند. نسبت تکوین آزمایشگاهی از بلاستوسیست، تقسیم سلولی، پتانسیل اتصال، فعالیت آلکالن فسفاتاز، تکوین پس از کاشت و تولید کایمرا مورد بررسی و با گروه شاهد مقایسه گردید. 0/05>p معنیدار در نظر گرفته شد.
نتایج: آنتیسرم خرگوش در سلولهای ES موش باعث تأخیر تراکم جنین و decompaction در مرحله 8 سلولی شد. تکوین جنینهای 4 سلولی در حضور آنتیسرم برای 36 ساعت باعث کاهش و یا عدم وجود ICM شد. این جنینها همچنان فعالیت مثبت فسفاتاز، تقسیم سلولی نرمال، اتصال رویان، شکلگیری (ICM)، لانهگزینی و تکوین پس از لانهگزینی را نشان داد. علاوه بر این decompaction ناشی از آنتیسرم تولید و انتقال موش germline کایمریک را افزایش نداد.
نتیجهگیری: نتایج نشان داد که آنتیسرم در سلولهای ES باعث تأخیر تراکم جنین شده وبر روی لانهگزینی و تکوین جنین بعد از لانه گزینی و تولید کایمرا اثری نداشت.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. Dietrich JE, Hiiragi T. Stochastic patterning in the mouse preimplantation embryo. Development 2007; 134: 4219-4231. [DOI:10.1242/dev.003798]
2. Dietrich JE, Hiiragi T. Stochastic processes during mouse blastocyst patterning. Cells Tissues Organs 2008; 188: 46-51. [DOI:10.1159/000118783]
3. Eggan K, Akutsu H, Loring J, Jackson-Grusby L, Klemm M, Rideout 3rd WM, et al. Hybrid vigor, fetal overgrowth, and viability of mice derived by nuclear cloning and tetraploid embryo complementation. Proc Natl Acad Sci USA 2001; 98: 6209-6214. [DOI:10.1073/pnas.101118898]
4. Johnson MH, Chakraborty J, Handyside AH, Willison K, Stern P. The effect of prolonged decompaction on the development of the preimplantation mouse embryo. Embryol Exp Morph 1979; 54: 241-261.
5. Johnson MH, Maro B, Takeichi M. The role of cell adhesion in the synchronization and orientation of polarization in 8-cell mouse blastomeres. J Embryol Exp Morphol 1986; 93: 239-255.
6. Johnson MH, McConnell JM. Lineage allocation and cell polarity during mouse embryogenesis. Semin Cell Dev Biol 2004; 15: 583-597. [DOI:10.1016/j.semcdb.2004.04.002]
7. Li CB, Hu LL, Wang ZD, Zhong SQ, Lei L. Regulation of compaction initiation in mouse embryo. Yi Chuan 2009; 31: 1177-1184. [DOI:10.3724/SP.J.1005.2009.01177]
8. Lu Y, Su Z, Li Y, Luo J, Tan Z, Ji H, et al. Generation and characterization of rabbit monoclonal antibodies against the native cell surface antigens of embryonic stem cells. J Genet Genomics 2010; 37: 483-492. [DOI:10.1016/S1673-8527(09)60068-0]
9. Nagy A, Gertsenstein M, Vintersten K, Behringer R. Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory Manual. 3rd Ed. New York, Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2003.
10. Nagy A, Gocza E, Diaz EM, Prideaux V, Ivçnyi E, Markkula M, et al. Embryonic stem cells alone are able to support fetal development in the mouse. Development 1990; 110: 815-821.
11. Nagy A, Rossant J, Nagy R, Abramow-Newerly W, Roder JC. Derivation of completely cell culture- derived mice from early-passage embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci USA 1993; 90: 8424-8428. [DOI:10.1073/pnas.90.18.8424]
12. Rossant J, Tam PP. Blastocyst lineage formation, early embryonic asymmetries and axis patterning in the mouse. Development 2009; 136: 701-713. [DOI:10.1242/dev.017178]
13. Shirayoshi Y, Okada TS, Takeichi M. The calcium-dependent cell-cell adhesion system regulates inner cell mass formation and cell surface polarization in early mouse development. Cell 1983; 35: 631-638. [DOI:10.1016/0092-8674(83)90095-8]
14. Tan Z, Zhang J, Su Z, Gu B, Jiang X, Luo J, et al. Production of rabbit monoclonal antibodies against mouse embryonic stem cells and identification of pluripotency-associated surface antigens. J Immunol Methods 2011; 365: 149-157. [DOI:10.1016/j.jim.2010.12.012]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
