چهارشنبه 13 خرداد 1405
[Archive]
دوره 24، شماره 4 - ( 2-1405 )
جلد 24 شماره 4 صفحات 336-325 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR.MODAREs.REC.1401.227
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Shafieizade R, Hezavehei M, Shahverdi A, Halvaei I. Hydroxytyrosol protects sperm viability and DNA integrity in human asthenoteratozoospermia during incubation: An experimental study. IJRM 2026; 24 (4) :325-336
URL: http://ijrm.ir/article-1-3765-fa.html
URL: http://ijrm.ir/article-1-3765-fa.html
هیدروکسی تیروزول از زندهمانی و سلامت DNA اسپرم در نمونههای آستنوتراتوزواسپرمی انسانی در طی انکوباسیون محافظت میکند: یک مطالعهی تجربی برونتنی. International Journal of Reproductive BioMedicine. 1405; 24 (4) :325-336
چکیده: (39 مشاهده)
مقدمه: آستنوتراتوزواسپرمی (AT) که با کاهش حرکت اسپرم و ناهنجاریهای مورفولوژیک مشخص میشود، یکی از علل مهم ناباروری مردان است. در طی دستکاری مایع منی، نمونههای AT مقادیر بالایی از گونههای فعال اکسیژن (ROS) تولید میکنند که این امر باعث افزایش تنش اکسایشی و آسیب به اسپرم میشود.
هدف: این مطالعه تأثیر هیدروکسیتیروزول (HT)، یک آنتیاکسیدان طبیعی، را بر کیفیت اسپرم و سطح ROS در نمونههای AT طی انکوباسیون بررسی کرد.
مواد و روش ها: این تحقیق در 2 فاز انجام شد. در فاز اول، ۲۰ نمونه AT به پنج گروه (۰، ۲۵، ۵۰، ۷۵ و ۱۰۰ میکروگرم بر میلیلیتر HT) تقسیم شدند و برای ۳۰، ۴۵ و ۶۰ دقیقه انکوبه شدند تا شرایط بهینه بر اساس حرکت و زندهمانی اسپرم تعیین شود. در فاز دوم، ۲۰ نمونه AT دیگر با غلظتهای ۲۵ و ۵۰ میکروگرم بر میلی لیتر HT به مدت ۳۰ دقیقه تیمار شدند. پتانسیل غشای میتوکندری، ROS داخلسلولی، میزان قطعهقطعه شدن DNA و پراکسیداسیون لیپیدها ارزیابی شدند.
نتایج: حرکت اسپرم بعد از انکوباسیون کاهش یافت. گرچه تیمار با HT حرکت را حفظ کرد اما منجر به ایجاد اختلاف معنی داری از نظر آماری نشد. همچنین زندهمانی به دنبال انکوباسیون کاهش پیدا کرد. غلظت ۲۵ میکروگرم بر میلی لیتر HT پس از ۳۰ دقیقه زندهمانی اسپرم را بهطور معناداری نسبت به کنترل افزایش داد (02/0 = p). انکوباسیون منجر به افزایش معنادار قطعهقطعه شدن DNA شد اما در هر دو غلظت ۲۵ و ۵۰ میکروگرم بر میلی لیتر HT باعث کاهش معنادار قطعهقطعه شدن DNA پس از ۳۰ دقیقه انکوباسیون شد. هیچ اثر معناداری بر پراکسیداسیون لیپیدها، سطح ROS یا پتانسیل غشای میتوکندری مشاهده نشد.
نتیجه گیری: انکوباسیون اسپرمهایAT با HT به مدت ۳۰ دقیقه موجب بهبود زندهمانی اسپرم و کاهش آسیب DNA شد. این یافتهها نشان میدهد HT میتواند بهعنوان یک آنتیاکسیدان مفید در فناوریهای کمکباروری برای مردان مبتلا به AT با کاهش آسیبهای اسپرم ناشی از تنش اکسایشی مورد استفاده قرار گیرد.
هدف: این مطالعه تأثیر هیدروکسیتیروزول (HT)، یک آنتیاکسیدان طبیعی، را بر کیفیت اسپرم و سطح ROS در نمونههای AT طی انکوباسیون بررسی کرد.
مواد و روش ها: این تحقیق در 2 فاز انجام شد. در فاز اول، ۲۰ نمونه AT به پنج گروه (۰، ۲۵، ۵۰، ۷۵ و ۱۰۰ میکروگرم بر میلیلیتر HT) تقسیم شدند و برای ۳۰، ۴۵ و ۶۰ دقیقه انکوبه شدند تا شرایط بهینه بر اساس حرکت و زندهمانی اسپرم تعیین شود. در فاز دوم، ۲۰ نمونه AT دیگر با غلظتهای ۲۵ و ۵۰ میکروگرم بر میلی لیتر HT به مدت ۳۰ دقیقه تیمار شدند. پتانسیل غشای میتوکندری، ROS داخلسلولی، میزان قطعهقطعه شدن DNA و پراکسیداسیون لیپیدها ارزیابی شدند.
نتایج: حرکت اسپرم بعد از انکوباسیون کاهش یافت. گرچه تیمار با HT حرکت را حفظ کرد اما منجر به ایجاد اختلاف معنی داری از نظر آماری نشد. همچنین زندهمانی به دنبال انکوباسیون کاهش پیدا کرد. غلظت ۲۵ میکروگرم بر میلی لیتر HT پس از ۳۰ دقیقه زندهمانی اسپرم را بهطور معناداری نسبت به کنترل افزایش داد (02/0 = p). انکوباسیون منجر به افزایش معنادار قطعهقطعه شدن DNA شد اما در هر دو غلظت ۲۵ و ۵۰ میکروگرم بر میلی لیتر HT باعث کاهش معنادار قطعهقطعه شدن DNA پس از ۳۰ دقیقه انکوباسیون شد. هیچ اثر معناداری بر پراکسیداسیون لیپیدها، سطح ROS یا پتانسیل غشای میتوکندری مشاهده نشد.
نتیجه گیری: انکوباسیون اسپرمهایAT با HT به مدت ۳۰ دقیقه موجب بهبود زندهمانی اسپرم و کاهش آسیب DNA شد. این یافتهها نشان میدهد HT میتواند بهعنوان یک آنتیاکسیدان مفید در فناوریهای کمکباروری برای مردان مبتلا به AT با کاهش آسیبهای اسپرم ناشی از تنش اکسایشی مورد استفاده قرار گیرد.
واژههای کلیدی: مایع منی غیرطبیعی، آنتیاکسیدان، زمان انکوباسیون، تنش اکسایشی، یکپارگی DNA، آستنوتراتوزوسپرمی.
نوع مطالعه: Original Article |
فهرست منابع
1. World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 6th Ed. Geneva: World Health Organization Press; 2021.
2. Homa ST, Vessey W, Perez-Miranda A, Riyait T, Agarwal A. Reactive oxygen species (ROS) in human semen: Determination of a reference range. J Assist Reprod Genet 2015; 32: 757-764. [DOI:10.1007/s10815-015-0454-x] [PMID] [PMCID]
3. Agarwal A, Tvrda E, Sharma R. Relationship amongst teratozoospermia, seminal oxidative stress and male infertility. Reprod Biol Endocrinol 2014; 12: 45. [DOI:10.1186/1477-7827-12-45] [PMID] [PMCID]
4. Ghafarizadeh AA, Vaezi G, Shariatzadeh MA, Malekirad AA. Effect of in vitro selenium supplementation on sperm quality in asthenoteratozoospermic men. Andrologia 2018; 50: e12869. [DOI:10.1111/and.12869] [PMID]
5. Wang Y, Fu X, Li H. Mechanisms of oxidative stress-induced sperm dysfunction. Front Endocrinol (Lausanne) 2025; 16: 1520835. [DOI:10.3389/fendo.2025.1520835] [PMID] [PMCID]
6. Ghasemian Nafchi H, Azizi Y, Amjadi F, Halvaei I. In vitro effects of plasma rich in growth factors on human teratozoospermic semen samples. Syst Biol Reprod Med 2023; 69: 255-263. [DOI:10.1080/19396368.2023.2180455] [PMID]
7. Bahmyari R, Zare M, Sharma R, Agarwal A, Halvaei I. The efficacy of antioxidants in sperm parameters and production of reactive oxygen species levels during the freeze-thaw process: A systematic review and meta-analysis. Andrologia 2020; 52: e13514. [DOI:10.1111/and.13514] [PMID]
8. Bertelli M, Kiani AK, Paolacci S, Manara E, Kurti D, Dhuli K, et al. Hydroxytyrosol: A natural compound with promising pharmacological activities. J Biotechnol 2020; 309: 29-33. [DOI:10.1016/j.jbiotec.2019.12.016] [PMID]
9. Baharsaadi M, Hezavehei M, Shahverdi A, Halvaei I. Evaluation of the effects of hydroxytyrosol on human sperm parameters during cryopreservation. Cryobiology 2024; 114: 104840. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2023.104840] [PMID]
10. Kargari M, Sharafi M, Karimi Torshizi MA, Hezavehei M, Zanganeh Z. Effects of hydroxytyrosol on post-thaw quality of rooster sperm. Reprod Domest Anim 2024; 59: e14588. [DOI:10.1111/rda.14588] [PMID]
11. Peng S, Zhang B, Yao J, Duan D, Fang J. Dual protection of hydroxytyrosol, an olive oil polyphenol, against oxidative damage in PC12 cells. Food Funct 2015; 6: 2091-2100. [DOI:10.1039/C5FO00097A] [PMID]
12. Karković Marković A, Torić J, Barbarić M, Jakobušić Brala C. Hydroxytyrosol, tyrosol and derivatives and their potential effects on human health. Molecules 2019; 24: 2001. [DOI:10.3390/molecules24102001] [PMID] [PMCID]
13. Bayram B, Ozcelik B, Grimm S, Roeder T, Schrader C, Ernst IMA, et al. A diet rich in olive oil phenolics reduces oxidative stress in the heart of SAMP8 mice by induction of Nrf2-dependent gene expression. Rejuvenation Res 2012; 15: 71-81. [DOI:10.1089/rej.2011.1245] [PMID] [PMCID]
14. Sharafi M, Blondin P, Vincent P, Anzar M, Benson JD. Hydroxytyrosol and resveratrol improves kinetic and flow cytometric parameters of cryopreserved bull semen with low cryotolerance. Anim Reprod Sci 2022; 245: 107065. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2022.107065] [PMID]
15. Kedechi S, Zribi N, Louati N, Menif H, Sellami A, Lassoued S, et al. Antioxidant effect of hydroxytyrosol on human sperm quality during in vitro incubation. Andrologia 2017; 49: e12595. [DOI:10.1111/and.12595] [PMID]
16. Benitez Mora MP, Del Prete C, Longobardi V, Cocchia N, Esposito R, Piscopo F, et al. Incubating frozen-thawed buffalo sperm with olive fruit extracts counteracts thawing-induced oxidative stress and improves semen quality. Theriogenology 2024; 229: 118-126. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2024.08.024] [PMID]
17. Benitez Mora MP, Kosior MA, Longobardi V, Del Prete C, Fedele FL, Staropoli A, et al. Incorporating olive (Olea europaea L) fruit extracts in a tris-based extender improves buffalo semen cryotolerance by reducing oxidative stress. Anim Reprod Sci 2025; 274: 107787. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2025.107787] [PMID]
18. Balbi M, Flaherti AL, Otero Fernández T, Farnetano NA, Anchordoquy JM, Anchordoquy JP. Influence of hydroxytyrosol in semen extenders on fertilizing capacity and embryo development using cooled and cryopreserved bull sperm. Theriogenology 2026; 250: 117702. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2025.117702] [PMID]
19. Nabavinia MS, Yari A, Ghasemi-Esmailabad S, Gholoobi A, Gholizadeh L, Nabi A, et al. Improvement of human sperm properties with platelet-rich plasma as a cryoprotectant supplement. Cell Tissue Bank 2023; 24: 307-315. [DOI:10.1007/s10561-022-10032-6] [PMID]
20. Mirzaei J, Movahedin M, Halvaei I. Plasma-rich in growth factors ameliorates detrimental effects of cryopreservation on human sperm: A prospective study. Cell J 2022; 24: 330-336.
21. Keyvanlou S, Movahedin M, Halvaei I. Effect of plasma-rich in growth factors supplementation timing on cryopreservation outcomes in normozoospermic samples and its protective role in asthenoteratozoospermia. J Hum Reprod Sci 2026; 19: 54-61. [DOI:10.4103/jhrs.jhrs_209_25] [PMID] [PMCID]
22. Hosseinmardi M, Siadat F, Sharafi M, Hayati Roodbari N, Hezavehei M. Protective effect of cerium oxide nanoparticles on human sperm function during cryopreservation. Biopreserv Biobank 2022; 20: 24-30. [DOI:10.1089/bio.2021.0020] [PMID]
23. Arando A, Delgado JV, Bermúdez‐Oria A, León JM, Fernández‐Prior Á, Nogales S, et al. Effect of olive‐derived antioxidants (3, 4‐dihydroxyphenylethanol and 3, 4 dihydroxyphenylglycol) on sperm motility and fertility in liquid ram sperm stored at 15°C or 5°C. Reprod Domest Anim 2020; 55: 325-332. [DOI:10.1111/rda.13631] [PMID]
24. Arando A, Delgado JV, Fernández-Prior A, León JM, Bermúdez-Oria A, Nogales S, et al. Effect of different olive oil-derived antioxidants (hydroxytyrosol and 3,4-dihydroxyphenylglycol) on the quality of frozen-thawed ram sperm. Cryobiology 2019; 86: 33-39. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2019.01.002] [PMID]
25. Arando Arbulu A, Navas González FJ, Bermúdez-Oria A, Delgado Bermejo JV, Fernández-Prior Á, González Ariza A, et al. Bayesian analysis of the effects of olive oil-derived antioxidants on cryopreserved buck sperm parameters. Animals (Basel) 2021; 11: 2032. [DOI:10.3390/ani11072032] [PMID] [PMCID]
26. Alharbi YM, Ali M, Alharbi MS. Impact of the antioxidant hydroxytyrosol on the quality of post-thawed stallion semen. Vet Med Int 2024; 2024: 6558480. [DOI:10.1155/2024/6558480] [PMID] [PMCID]
27. Alahmar AT. The effects of oral antioxidants on the semen of men with idiopathic oligoasthenoteratozoospermia. Clin Exp Reprod Med 2018; 45: 57-66. [DOI:10.5653/cerm.2018.45.2.57] [PMID] [PMCID]
28. Ibrahim SF, Osman K, Das S, Othman AM, Majid NA, Rahman MPA. A study of the antioxidant effect of alpha lipoic acids on sperm quality. Clinics (Sao Paulo) 2008; 63: 545-550. [DOI:10.1590/S1807-59322008000400022] [PMID] [PMCID]
29. Li D, Zhang W, Tian X, He Y, Xiao Z, Zhao X, et al. Hydroxytyrosol effectively improves the quality of pig sperm at 17°C. Theriogenology 2022; 177: 172-182. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2021.10.018] [PMID]
30. Hamden K, Allouche N, Damak M, Carreau S, Elfeki A. Potential protective effect of hydroxytyrosol against glucose-induced toxicity in spermatozoa in vitro. Asia Life Sci 2010; 19: 333-344. [DOI:10.1007/s10068-010-0062-6]
31. Zhaku V, Agarwal A, Beadini S, Henkel R, Finelli R, Beadini N, et al. Male infertility, oxidative stress and antioxidants. In: Erkekoglu P, Santos JS, Carmona-Ribeiro AM. Vitamin E in health disease-interactions, diseases health aspects. Intechopen; 2021. [DOI:10.5772/intechopen.98204]
32. González-Marín C, Gosálvez J, Roy R. Types, causes, detection and repair of DNA fragmentation in animal and human sperm cells. Int J Mol Sci 2012; 13: 14026-14052. [DOI:10.3390/ijms131114026] [PMID] [PMCID]
33. Aitken RJ, Drevet JR, Moazamian A, Gharagozloo P. Male infertility and oxidative stress: A focus on the underlying mechanisms. Antioxidants (Basel) 2022; 11: 306. [DOI:10.3390/antiox11020306] [PMID] [PMCID]
34. Qamar AY, Naveed MI, Raza S, Fang X, Roy PK, Bang S, et al. Role of antioxidants in fertility preservation of sperm - A narrative review. Anim Biosci 2023; 36: 385-403. [DOI:10.5713/ab.22.0325] [PMID] [PMCID]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
